DIG Labeling Methods

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DIG DNA Labeling by PCR

PCRラべリングは、テンプレートが極めて少量・あるいは短いといった制限がある場合、有効な手法です。 この手法は他のラべリングより至適化が容易なうえ、標識プローブを高い収量で産出できるメリットがあります。

PCRラべリングでは、DIG-dUTPを組み込まれた熱安定性PolymeraseがテンプレートDNAの特定領域を増幅します。結果として、特異性・感度とも優れたラべリング用ハイブリダイゼーション プローブが産生されます。

Reaction principle

通常のPCR反応を通じてDigoxigenin-11-dUTPは、新しく合成されるDNAに取り込まれます。
PCRによってごく微量のDNAもµgオーダーにまで増幅が可能です。 唯一の条件といえば、適正なプライマー合成のために、標的の配列情報を必要とすることだけです。
Non-RI DIG systemではステロイド ハプテンであるDigoxigeninを使用し、ハイブリダイゼーションおよび発色/発光検出に用いるDNA, RNA, またはオリゴヌクレオチドを標識します。 Digoxigeninは、アルカリ不安定エステルを介して、dUTPと結合します。 標識dUTPは、DNA Polymeraseを使用した酵素的な核酸合成により、簡単に取り込まれます。 Non-RIラべリングとPCR反応は、PCR産物の分析および(限られた標的配列からの)標識プローブ調製のための強力なコンビネーション ツールです。

Critical hints about PCR labeling

PCR conditions

• PCR増幅のパラメータを至適化する (サイクル設定, テンプレート濃度, プライマー配列およびプライナー濃度)各テンプレートおよびプライマーごとに、DIG-dUTP不在下で行うこと。

Template

• クローン挿入物をテンプレートとして用いると良い結果が得やすい。 反面、ゲノムDNAは扱いが困難。
• テンプレート濃度は、プローブの特異性に関して大きな影響を与えるファクターとなる。

Labeling

• GCリッチな領域もテンプレートとして使用できる
• ほとんどのテンプレートに対して標準的な濃度のMgCl₂(1.5 mM)を適用できる。
  したがって、至適化のプロセスが必要なのはキット中のdNTPストック溶液(10x)によるDIG-dUTP濃度の調整だけです。 これは、DNAテンプレートによっては(特にGC含有量が多い、またはテンプレートが長い場合)"標準的な" DIG-dUTP濃度においても、十分な増幅効率が得られない場合があるためです。

DIG Random Primed DNA Labeling(ランダム プライミング)

標識プローブはSouthern blotによるシングル コピーの遺伝子検出に最適ですが、もちろん通常のDot blot/Northern blotにも使用することができます。

プライマー自体が異なる6塩基の配列を有するため、プローブ産物もまちまちな長さをもつ断片となります。 したがってゲル上でも固有のバンドではなく、スポット状のシミとなって検出されます。 標識プローブ長の分散は、元となるテンプレート長に依存しています。

Reaction principle

Klenow Enzymeは6量体プライマーとアルカリ不安定DIG-11-dUTP存在下で、DNAテンプレートを複製します。 平均的に、Klenow Enzymeは20~25ヌクレオチド配列毎にDIG部位を挿入します。 ラベル産物は0.10~0.03 pgのターゲットDNAを検出できる、均一かつ高感度なハイブリダイゼーション プローブとなります。

Note:ランダム プライミングではDIG分子の配列が重要となります。 DIG分子同士が近すぎた場合、立体障害によってAnti-DIG抗体が標識プローブと結合できなくなる場合があるためです。

Nick Translation Mixes for In Situ Probes (ニック トランスレーション)

ニック トランスレーション法は、Rigby [1]によって提唱されたのち、Langer [2]によって核酸のアナログを取り込む用途へと進化を遂げました。 ここで述べる手法では、DNA産物のおおよそ20~25塩基配列毎に修飾されたヌクレオチド(DIG-, Biotin -, Fluorescein-, またはTetramethylrhodamine-dUTP)が挿入されることになります。 このラベル密度は、修飾ヌクレオチドを酵素が取り込むうえで効果的なだけでなく、免疫染色による検出(間接法)において最も高感度なターゲットを産出しうるのです。 in situ Hybridizationの用途においてニック トランスレーションで作成できる適正なラベル断片長はおよそ200 ~ 500ベースです。

Note:ニック トランスレーション法においてDNAの変性は必要ありません。

Reaction principle

E. coli polymerase I とDNase IをdsDNAテンプレートに添加すると、ニック トランスレーション反応によって、合成されるDNAにはDigoxigenin-11-dUTPが取り込まれるようになります。ニック トランスレーションは核酸のin situラべリングに極めて適した手法です。

References

• [1] Rigby, P. W. J.; Dieckmann, M.; Rhodes, C.; Berg, P. (1977) Labeling deoxyribonucleic acid to high specific activity in vitro by nick translation with DNA polymerase I. J. Mol. Biol. 113, 237–241.
• [2] Langer, P. R.; Waldrop, A. A.; Ward, D. C. (1981) Enzymatic synthesis of biotin-labeled polynucleotides: Novel nucleic acid affinity probes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78, 6633–6637.

Transcriptional Labeling of RNA Probes (in vitro Transcription)

アプリケーションによって(たとえば数ngオーダーのトータルRNA中からレアなmRNAを検出する場合など)DIG標識RNAは、DIG標識DNAよりもずっと効果的なハイブリダイゼーション プローブたりえます。 標識RNAプローブは、DNAテンプレートからのin vitro Transcriptionによって合成されます。転写されるDNAは、promoter(T7, SP6, またはT3 RNA Polymerase)を含む、適切な転写vectorの多重クローニング部位(MCS)にクローンさせます。 引き続きテンプレートDNAを(挿入部位に近い)適切なvectorの部位で開裂し、直鎖化します。 RNA Polymeraseは、(DIG-UTPを含む)リボヌクレオチド混合物の存在下で、DNAインサートをAntisense RNAへと転写します。 数百回におよぶDNA転写を経て、完全長のDIG標識RNAプローブを得ることができます(通常1 µg DNAから10 ~ 20 µg RNAを取得できます)。 この手法では、RNAの約25~30塩基毎に1 分子のDIGが取り込まれます。

Reaction principle

DNAテンプレートは、promoter (T7, SP6, またはT3 RNA Polymerase)を含む、適切な転写vectorのpolylinker部位にクローンさせます。適切な部位でテンプレートDNAを直鎖化させた後、DIG-11-UTP存在下でRNAが転写されます。 標準的な条件下では、1µgのテンプレートDNAから約10µgの完全長DIG標識RNAが転写されます。

Critical hints about RNA probe labeling

RNases

RNaseは遍在性が高く、保因子活性を必要としません。 実験を成功させるには、以下の手段によってRNaseによるコンタミネーションを回避する必要があります。

• ディスポーザブルのプラスチック容器や、(RNase ZAPなどで)消毒済みのガラス容器を使用する。
• あらゆる溶液にピロ炭酸ジエチル(DEPC)または二炭酸ジメチル(DMDC)処理をする。 可能であればオートクレーブ処理をする。
• 実験中を通じ、実験用手袋を着用する

Template purity

• DNAテンプレートの純度を高く保ちましょう。ラべリング効率の大部分はテンプレート純度に影響されます。
• テンプレートは直鎖化し、フェノール/クロロフォルムで抽出し、エタノールで沈殿させます。

Template sequence

• 特定のリボソームRNA(28sや18s)からの意図しないシグナルを弱めるため、テンプレートからは可能な限りpolylinker配列を取り除きましょう。
• 不必要な配列が転写されることを避けるため、5' 粘着末端あるいは平滑末端を生じる制限酵素を使用しましょう。

Template length

• 適正なテンプレート長: 約 1 kb
• 最短のテンプレート長: 200 bp

Storage of probe

• RNAプローブを長期保存する場合には、分注して-20°Cまたは-70°Cで冷凍します。
• エタノール中のDIG-標識プローブは、-20°Cまたは-70°Cで約1年間安定しています。

DIG Oligonucleotide Labeling (オリゴヌクレオチド)

ISHをはじめとしたいくつかのアプリケーションにおいて、DIG標識合成オリゴは最良のハイブリダイゼーション プローブとなります。 ISH以外にもDIG標識オリゴはハイブリダイゼーション用途として以下の目的にも使用できます。

• Dot/slot blots
• Library screening
• Southern blotによる遺伝子配列の検出
  Note:オリゴヌクレオチド プローブは極めて高感度なので、十分な量のターゲットDNA(たとえば10 µg human genomic DNA)があればゲノムの混在する環境下でも検出が可能です。
• Northern blotによる多量のmRNA検出

DIG標識オリゴを用いた手法の代表的パターンを以下に列挙します。

Labeling 5´ end with DIG-NHS-Ester (5'末端ラべリング)

Labeling 3´ end with DIG-ddUTP (3'末端ラべリング)

Adding a 3´ tail of DIG-dUTP and dATP (テイリング)

標識プローブ収量の同定

ラベルされたプローブの定量法として推奨されるのは、DIG標識プローブの希釈系列と既知の濃度のDIG標識コントロール核酸とを比較する、直接検出法です。

Note:PCRラべリングによってプローブを作成した場合には、直接法ではなくゲル泳動による評価が必要です。

直接法によるラベリング効率の同定

• ナイロン メンブレンに、DIGラベルされたプローブの希釈系列を液滴します(所要時間: 15 分)
• 発光基質溶液を用いて免疫検出を行います(所要時間: 2 ~ 2.5 hours)